OpenAI

6 novembre 2026

Publication

Évaluer les agents d’IA dans le travail quotidien en laboratoire expérimental

Découvrez BioBasicsBench, un benchmark évaluant l’interprétation des données expérimentales brutes par les agents d’IA à travers 100 tâches courantes de laboratoire.

Notre mission est de faire en sorte que l’intelligence artificielle générale bénéficie à toute l’humanité. Dans le cadre de cette mission, nous voulons aider les scientifiques à accélérer la recherche biologique, de la compréhension des maladies au développement de nouveaux traitements. Pour y contribuer, les agents d’IA doivent interpréter de façon fiable les données expérimentales que les scientifiques utilisent chaque jour en laboratoire, où ils mènent des expériences sur des échantillons biologiques. Le travail quotidien en laboratoire expérimental comporte des expériences ratées, des images ambiguës et des observations contradictoires. Les benchmarks existants, conçus autour de graphiques et d’images sélectionnés pour des publications scientifiques, peuvent passer à côté de cette ambiguïté et du travail de résolution des problèmes qu’elle exige. C’est pourquoi nous présentons BioBasicsBench, un nouveau benchmark développé avec Ligo, une entreprise de biotechnologie spécialisée dans la conception d’enzymes, pour mesurer les capacités des agents en analyse courante de laboratoire.

Les 100 tâches du benchmark évaluent si les agents savent interpréter des données expérimentales brutes, identifier des erreurs et reconnaître quand les données ne permettent pas d’étayer une conclusion. Réussir ces tâches est important : mal interpréter une image ou négliger un problème avec les témoins servant à vérifier les résultats d’une expérience peut conduire les scientifiques à tirer une conclusion erronée et à consacrer du temps à des expériences qui ne répondront pas à leur question.

Au niveau « xhigh », qui permet davantage de raisonnement par tâche, GPT‑6 Astra a obtenu en moyenne 66,7 % des points disponibles, contre 43,8 % pour GPT‑5.6 Sol. Les résultats montrent des progrès dans l’analyse courante en laboratoire, avec une marge d’amélioration dans l’interprétation des images, la vérification des témoins et la prise en compte du contexte expérimental.

Au cœur de BioBasicsBench

BioBasicsBench utilise des données expérimentales brutes, allant des images de gels et des boîtes de colonies aux images de microscopie et aux relevés d’instruments.

BioBasicsBench comprend 100 tâches couvrant cinq domaines du travail courant en laboratoire expérimental : méthodes d’analyse des protéines, imagerie et cytométrie, quantification et essais, méthodes d’analyse des acides nucléiques et clonage moléculaire. Les tâches vont de demandes simples, comme lire le poids moléculaire d’un échantillon d’ADN dans un gel, à l’analyse détaillée d’essais. Toutes relèvent toutefois du travail courant que les scientifiques de laboratoire devraient pouvoir accomplir de façon fiable.

Les scientifiques ont créé les tâches à partir des données de leurs propres expériences, en associant à chaque question des critères de notation rédigés par des experts. Chaque tâche a fait l’objet d’une revue interne par un scientifique de Ligo qui ne l’avait pas rédigée, d’une revue externe par un scientifique titulaire d’un doctorat travaillant en laboratoire expérimental, puis d’une revue interne finale.

Les agents fournissent une réponse structurée contenant la conclusion, la mesure ou la recommandation demandée et, si nécessaire, le raisonnement qui l’étaye. Les réponses reçoivent des points pour chaque critère de la grille de notation, ce qui permet au benchmark de distinguer une conclusion correcte d’une analyse partiellement correcte. La plupart des tâches évaluent plusieurs compétences à la fois, notamment les connaissances biologiques, l’interprétation d’images et d’autres données, la détection d’erreurs et la compréhension des protocoles.

« Tâches uniques » compte chaque tâche une seule fois. Les colonnes de compétences comptent les tâches portant chaque étiquette de compétence. Ces catégories se recoupent : une tâche peut figurer dans plusieurs colonnes, il ne faut donc pas additionner ces nombres pour obtenir un total de tâches. La couleur indique le domaine ; une teinte plus foncée indique une plus grande part des tâches de ce domaine évaluant une compétence.

Les données d’entrée conservent les formats utilisés par les scientifiques : images de gels et de blots, photographies de boîtes, piles d’images de microscopie, lectures de séquençage, exports de lecteurs de plaques et vidéos de manipulations à la paillasse. Une tâche peut inclure plusieurs types de données. Des fiches de référence, comme des schémas de marqueurs de taille et des cartes de plasmides, aident à interpréter les données expérimentales.

Ce que reçoit l’agent

Type de données

Tâches

Contenu

Gels et blots

31

Gels d’agarose pour l’ADN, gels SDS-PAGE, Western blots

Protocoles, notes et spécifications

27

Protocoles et procédures opératoires normalisées, cahiers de laboratoire et comptes rendus d’exécution, photographies de notes manuscrites, catalogues, spécifications des instruments, méthodes publiées

Tableaux et exports d’instruments

20

Exports CSV et Excel, plans des pistes et inventaires, fichiers bruts de cytométrie en flux (FCS)

Photos de paillasses, d’appareils et de réactifs

18

Paillasses, cuves d’électrophorèse, tubes de réactifs et de culture, plaque PCR, portoirs à tubes, bandelettes pH, concentrateur, congélateur, plateau de robot de pipetage

Microscopie

14

Images brutes en champ clair et en fluorescence, séries multicanaux, piles d’images en Z, vidéos en accéléré

Écrans d’instruments et graphiques

13

Photos d’écrans de cytomètres en flux, microscopes, NanoDrop, lecteurs de plaques et balances ; exports de courbes d’étalonnage, chromatogrammes et graphiques

Fichiers de séquençage

12

Fichiers FASTQ bruts de lectures longues, séquences FASTA, cartes GenBank

Vidéos de protocoles

7

Ensemencement par stries, inoculation, dilutions en série, préparation de cuves SDS-PAGE et d’incubateurs, pesée sur une balance

Boîtes de gélose et colonies

7

Boîtes de transformation, criblages bleu/blanc, boîtes avec disques d’antibiotiques

Fiches de référence

21

Schémas de marqueurs de taille, cartes de plasmides, nuanciers pH (documents complémentaires)

Nombre de tâches incluant chaque type de données. Les catégories se recoupent ; les fiches de référence sont des documents complémentaires.

Les scientifiques ont rédigé les tâches à partir des données de leurs propres expériences, en associant les données expérimentales à une question et à une grille de notation rédigée par des experts. Chaque tâche a fait l’objet d’une revue interne par un scientifique de Ligo qui ne l’avait pas rédigée, d’une revue externe par un scientifique titulaire d’un doctorat travaillant en laboratoire expérimental, puis d’une revue interne finale. Les évaluateurs ont vérifié le prompt, les données expérimentales, la grille de notation, les notes de l’auteur et une tentative notée d’un modèle.

Les réponses sont notées selon la grille de la tâche, qui attribue des points à chaque critère. Selon la tâche, ces critères évaluent la conclusion, les résultats numériques, le raisonnement justificatif ou la reconnaissance du caractère insuffisant des données.

Résultats

Nous avons évalué sept modèles sur BioBasicsBench : GPT‑5.2, GPT‑5.4, GPT‑5.5, GPT‑5.6 Sol, GPT‑6.1 Sol, GPT‑6 Luna et GPT‑6 Astra. L’évaluation couvre 37 combinaisons de modèles et de niveaux d’effort de raisonnement, avec cinq tentatives sur chacune des 100 tâches par combinaison, soit 18 500 résultats au total.

Nous présentons la récompense moyenne : le score moyen par tâche, exprimé en pourcentage des points disponibles. Les barres d’erreur indiquent les intervalles de confiance à 95 %, calculés par rééchantillonnage de tâches entières, en gardant ensemble les cinq tentatives de chaque tâche.

Récompense moyenne en fonction du nombre moyen de tokens de sortie par tâche, sur une échelle logarithmique. Chaque point représente un niveau d’effort de raisonnement testé ; les lignes relient ces niveaux dans l’ordre. La valeur sur l’axe des abscisses double à chaque graduation. Les lignes orange en pointillés représentent les modèles GPT‑5, et les lignes bleues continues les modèles GPT‑6. Les barres discrètes indiquent les intervalles de confiance à 95 % obtenus par bootstrap de tâches entières. Chaque niveau inclut les 100 tâches et cinq tentatives par tâche. Les niveaux d’effort diffèrent selon les modèles.

GPT‑6 Astra surpasse nettement GPT‑5.6 Sol, même avec un faible effort de raisonnement. Ces gains suggèrent que des capacités multimodales natives plus avancées pourraient être essentielles pour améliorer les performances d’analyse courante en laboratoire expérimental.

Performances au niveau d’effort de raisonnement xhigh

Modèle

Récompense moyenne

IC à 95 %

Tokens de sortie / tâche

GPT‑6 Astra

66,7 %

60,3–73,1 %

4 704

GPT‑6.1 Sol

62,0 %

55,6–68,4 %

5 238

GPT‑5.6 Sol

43,8 %

37,6–50,0 %

9 099

GPT‑6 Luna

38,3 %

32,3–44,5 %

13 120

GPT‑5.5

35,4 %

29,7–41,0 %

11 135

GPT‑5.4

33,2 %

28,3–38,4 %

13 717

GPT‑5.2

31,2 %

26,2–36,3 %

27 620

Xhigh est le niveau d’effort de raisonnement le plus élevé présenté pour les sept modèles. Chaque ligne inclut les 100 tâches et cinq tentatives par tâche. Les résultats au niveau d’effort Max, lorsqu’ils sont disponibles, figurent dans le graphique ci-dessus.

Les progrès de GPT‑6 Astra par rapport à GPT‑5.6 Sol

Reconnaître ce que les données peuvent ou non montrer

Surinterpréter les données est un piège courant en science, notamment du fait des biais qui surviennent lorsqu’on teste une hypothèse. Astra a montré une meilleure capacité à discerner les limites de ce que montrent les données et à ne pas tirer de conclusions injustifiées.

Dans cet exemple, GPT‑5.6 Sol a classé des cellules comme mortes d’après le signal d’un colorant utilisé pour détecter les cellules mortes. Mais le détecteur pouvait aussi capter la lumière d’un second colorant : la luminosité seule ne pouvait donc pas justifier cette conclusion. Astra a reconnu cette ambiguïté et demandé de meilleurs témoins pour distinguer les signaux.

Les mêmes cellules, trois canaux de détection

Champ clair : régions cellulaires 1 et 2.

Champ clair · lumière transmise

Canal 2 : régions cellulaires 1 et 2.

Canal 2 · marquage au SYTOX · 470–540 nm

Canal 3 : régions cellulaires 1 et 2.

Canal 3 · FUN-1 vert · 525–580 nm

Les mêmes régions cellulaires dans trois canaux ; les fenêtres de détection se chevauchent entre 525 et 540 nm. La fenêtre commune permet des interférences, dont l’ampleur n’a pas été mesurée. Chaque canal est affiché avec une échelle d’intensité linéaire distincte, identique pour les deux régions ; la luminosité ne peut pas être comparée quantitativement entre les canaux.

Meilleur traitement multimodal

La recherche scientifique est fortement multimodale et nécessite en permanence des interprétations visuelles et des prises de décision. Astra a montré des progrès importants dans le traitement de données multimodales fournies sous forme de photos et de vidéos, ainsi que de données brutes issues du séquençage, d’essais sur lecteur de plaques, de la microscopie et de la cytométrie en flux.

À un niveau élémentaire, ces progrès se sont manifestés par la capacité de GPT‑6 Astra à relever des détails plus fins dans les images prises pendant les expériences et à en tirer ainsi des conclusions plus précises, comme le montre cet exemple. Cette tâche demandait aux agents de tirer des conclusions d’une expérience de clonage d’ADN, dans laquelle les témoins sont essentiels. GPT‑5.6 Sol n’a vu aucune colonie sur la boîte témoin négatif et a fondé ses conclusions sur cette observation. GPT‑6 Astra a remarqué que l’étiquette de la boîte indiquait le mauvais antibiotique et l’a écartée à juste titre comme témoin fiable.

Une main gantée tient la boîte. L’inscription manuscrite sur le bord est entourée.

Photographie d’origine

Inscription agrandie sur le bord indiquant LB Kan50.

L’inscription sur le bord

La photographie d’origine du benchmark, avec l’inscription sur le bord entourée et agrandie. « LB Kan50 » désigne la kanamycine, un antibiotique différent de l’ampicilline utilisée dans l’expérience.

Garder le contexte expérimental à l’esprit

Pour interpréter correctement les données, les scientifiques doivent pouvoir garder à l’esprit leurs connaissances biologiques tacites et le contexte expérimental tout au long de l’analyse. Astra a montré une meilleure capacité à conserver ce contexte et à l’appliquer tout au long de son analyse.

Une tâche présentait une série d’images au microscope dans lesquelles des cellules devenaient tour à tour nettes et floues. Alors que GPT‑5.6 Sol cherchait une explication biologique à la disparition apparente des cellules, GPT‑6 Astra a correctement reconnu une pile d’images en Z : une série d’images prises à différentes profondeurs.

Variations de visibilité lors d’un balayage en profondeur

Image à 0 seconde avec le même emplacement cellulaire encadré.

0 s

Image à 3 secondes avec le même emplacement cellulaire encadré.

3 s

Image à 6 secondes avec le même emplacement cellulaire encadré.

6 s

Image à 9 secondes avec le même emplacement cellulaire encadré.

9 s

Image à 12 secondes avec le même emplacement cellulaire encadré.

12 s

Image à 15 secondes avec le même emplacement cellulaire encadré.

15 s

Six images de l’enregistrement d’origine. Les cadres en pointillés repèrent le même emplacement pendant le balayage en profondeur du microscope. Les temps correspondent à la position de lecture dans la vidéo fournie.

Les limites qui persistent chez les modèles

De meilleurs scores aux benchmarks ne signifient pas encore que les modèles peuvent porter des jugements fiables en laboratoire. Ces exemples d’Astra montrent comment les hypothèses, les réponses attendues et les étiquettes fournies peuvent primer sur les données, et comment une observation intermédiaire correcte peut ne pas guider la décision finale.

Laisser une hypothèse primer sur les témoins

Astra laisse une hypothèse familière primer sur l’interprétation étayée par les témoins expérimentaux. Il distingue les deux groupes de bandes issues des colonies, mais suppose qu’un produit PCR plus grand indiquerait un clonage réussi. Sur cette base, il propose les pistes 4, 6, 7 et 8 ; la comparaison avec les témoins dans la référence sélectionne au contraire les pistes 5, 9 et 10.

Gel annoté de PCR sur colonies. Les pistes 4, 6, 7 et 8, numérotées en rose, correspondent à la bande de l’ancien plasmide. Les pistes 5, 9 et 10, numérotées en bleu-vert, correspondent à la bande du nouveau produit.

La référence sélectionne les colonies 5, 9 et 10 ; Astra propose 4, 6, 7 et 8.

1 : marqueur · 2 : mélange de clonage · 3 : plasmide d’origine · 4–10 : échantillons de colonies

Interprétation des témoins
  1. La piste 3 contient uniquement le produit PCR du plasmide d’origine. Sa bande donne la position de référence de l’ancien plasmide.

  2. Dans l’interprétation de référence, la piste 2 contient les deux profils : l’assemblage incomplet laisse l’ancienne matrice/ossature plasmidique aux côtés du nouveau produit.

  3. Les colonies obtenues peuvent porter l’ancien ou le nouveau plasmide. Comparez leurs bandes à ces profils de référence.

Sélection de référence : 5, 9 et 10

Sélection d’Astra : 4, 6, 7 et 8. Astra choisit ce groupe en suggérant que le produit PCR le plus grand correspond à la construction recherchée.

Le regroupement visuel est correct, mais les identités expérimentales attribuées à ces groupes sont inversées par rapport à la référence. Astra sélectionne donc les mauvaises colonies à partir des résultats de PCR sur colonies, ce qui conduirait ensuite à purifier le mauvais plasmide.

Écarter les données qui contredisent son interprétation privilégiée

Astra écarte les observations qui contredisent son interprétation privilégiée. Il conclut que les vacuoles, des compartiments à l’intérieur des cellules, sont généralement plus sombres que le reste de la cellule, alors que certaines apparaissent plus claires sur la même image. Les deux aspects comptent : modifier la mise au point du microscope peut inverser le contraste. Les exemples plus sombres ne permettent donc pas d’établir une règle générale.

Image de cellules au microscope montrant l’aspect plus sombre dans la comparaison des contrastes.

Aspect plus sombre

Image de cellules au microscope montrant l’aspect plus clair dans la comparaison des contrastes.

Aspect plus clair

La généralisation d’Astra sur les vacuoles plus sombres omet les vacuoles plus claires visibles dans le même champ.

Ce que cette réponse omet

Certaines cellules présentent un contraste inverse. Ces deux aspects coexistent, car différentes profondeurs de mise au point peuvent inverser le contraste.

Astra examine plusieurs régions et remarque même que le contraste varie avec la mise au point. Il accorde ensuite plus de poids aux cellules qu’il juge plus nettes et ne retient dans sa réponse finale que leur description de vacuoles plus sombres. Les régions plus claires, qui contredisent cette description, ont été examinées mais ne sont pas prises en compte dans la conclusion.

Mal compter les colonies lors d’une mesure courante en laboratoire

Les repères de comptage d’Astra ne correspondent pas de façon fiable aux colonies individuelles : il ne distingue pas les colonies très proches, omet des colonies visibles et marque de la gélose sans colonie. Sur cette boîte, le résultat net est un surcomptage d’environ 12 % par rapport à la référence du benchmark.

A. Colonies très proches

Colonies très proches dans le recadrage d’origine.

Image d’origine

Colonies très proches avec un repère entre les colonies voisines.

Repères de comptage d’Astra

B. Colonies visibles non marquées

Deux colonies visibles dans le recadrage d’origine.

Image d’origine

Deux colonies visibles sans repère de comptage.

Repères de comptage d’Astra

C. Gélose sans colonie comptée comme une colonie

Gélose sans colonie dans le recadrage d’origine.

Image d’origine

Gélose sans colonie avec un repère de comptage erroné.

Repères de comptage d’Astra

A : un repère de comptage entre des colonies voisines. B : deux colonies visibles non marquées. C : de la gélose sans colonie comptée comme une colonie. Les cercles rouges indiquent les positions comptées par Astra. Les flèches noires sont des repères ajoutés pour la présentation.

Un comptage inexact des colonies affecte directement les estimations de l’efficacité d’introduction de l’ADN dans les cellules. À volume étalé et dilution constants, un surcomptage augmente cette estimation dans la même proportion.

Vers une assistance fiable en laboratoire

Accélérer la recherche biologique exige de bien accomplir le travail quotidien. BioBasicsBench fait de ce travail un objectif d’amélioration : interpréter les données expérimentales brutes, vérifier les témoins et reconnaître quand une conclusion n’est pas étayée. Progresser sur ces tâches pourrait aider les scientifiques à consacrer moins de temps à résoudre des problèmes et davantage à choisir les prochaines expériences à mener. Le suivi de ces capacités nous aidera aussi à comprendre leurs implications pour la biosécurité et la biosûreté.